《mRNA-LNP疫苗的結(jié)構(gòu)與穩(wěn)定性》文獻(xiàn)解讀系列四
文章來源:AVT發(fā)布時間:2021-09-02瀏覽次數(shù):
mRNA疫苗的體外穩(wěn)定性
正如之前在背景介紹中提到的,目前已批準(zhǔn)的 mRNA疫苗流通的主要障礙之一是它們必須以冷凍形式儲存。在 2–8 °C 的溫度下,輝瑞/BioNTech 和 Moderna 疫苗分別可穩(wěn)定保存 5 天和 30 天,兩家公司都為終端使用提供了詳細(xì)的處理說明。有趣的是,據(jù)報道 CureVac 的候選疫苗在冰箱溫度和 -60 °C 下可穩(wěn)定 3 個月。這些是目前發(fā)布了mRNA-LNP長期儲存條件的制造商,這種苛刻的溫度要求嚴(yán)重影響了這些疫苗的儲存、運(yùn)輸和流通。然而,迄今為止,在公開資料中幾乎沒有關(guān)于優(yōu)化mRNA 疫苗穩(wěn)定性的信息。本節(jié)旨在概述影響 mRNA-LNP 疫苗成分穩(wěn)定性的因素,并討論分析評價這種穩(wěn)定性的方法。
mRNA穩(wěn)定性
強(qiáng)烈影響所需儲存條件的主要因素是 mRNA 的穩(wěn)定性。如上文2.1 節(jié)所述,mRNA 分子的結(jié)構(gòu)經(jīng)過專門設(shè)計可以用于增加體內(nèi)靶抗原的翻譯。mRNA 的特殊性在于,即使是長 mRNA 鏈(通常長度在 1000 到 5000 個核苷酸之間)中的一個核苷酸發(fā)生變化(鏈斷裂或堿基氧化)便會導(dǎo)致翻譯終止。這使得 mRNA 疫苗與其他疫苗完全不同,在其他疫苗中,抗原的微小變化不一定對其功效產(chǎn)生顯影響。因此,對于 mRNA 疫苗,監(jiān)測整個分子的完整性是至關(guān)重要的。
mRNA 降解的方式有多種,可以分為化學(xué)和物理降解。化學(xué)降解包括 mRNA 分子中化學(xué)鍵的改變。物理不穩(wěn)定性包括變性(二級和三級結(jié)構(gòu)的喪失),與變性對蛋白質(zhì)生物制劑活性的影響不同,物理不穩(wěn)定性對mRNA的影響可能不太明顯。然而,變性還包括聚集和沉淀等變化,這些變化會影響mRNA的翻譯表達(dá)。在一篇關(guān)于核酸穩(wěn)定性的綜述中,Pogocki 和 Sch?neich 指出化學(xué)降解在siRNA降解中的影響比物理不穩(wěn)定性更大,對于鏈長更長的 mRNA來說可能更是如此。
mRNA在體外的化學(xué)降解主要包括水解和氧化,水解主要是發(fā)生在mRNA 分子骨架的磷酸二酯鍵(圖5 )。核糖上的2' OH 基團(tuán)起著至關(guān)重要的作用,因為導(dǎo)致 mRNA 鏈斷裂的酯交換反應(yīng)起始于磷酸酯鍵上的 2'OH 基團(tuán)的親核進(jìn)攻導(dǎo)致 P-O5' 酯鍵斷裂(圖5)。這個過程需要水,可以被核酸酶催化,也可以被 mRNA 分子本身和其他外源因素如酸和堿催化。在有關(guān) mRNA 水解的兩篇文獻(xiàn)中,作者指出 mRNA 的堿基序列和二級結(jié)構(gòu)會影響水解速率。具體而言,堿基堆積可能會降低磷酸二酯鍵的裂解速率,可以小化 mRNA 分子的“平均未配對概率”。可以使用專門設(shè)計的算法來選擇可以形成大雙鏈區(qū)域的單鏈 mRNA 的核苷酸序列。據(jù)稱,采用這種方法優(yōu)化后,體外穩(wěn)定性得到了改善。
CureVac、輝瑞/BioNTech 和 Moderna 疫苗之間的區(qū)別在于后兩者具有 1-甲基-假尿苷的單核苷摻入。之前的一項研究表明,這種修飾提高了 RNA 二級結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定性。CureVac 采用提高GC比例策略,具有類似的效果。
圖5 通過 2',3'-環(huán)狀磷酸酯,堿基催化RNA分子內(nèi)的磷酸二酯鍵水解、B表示Br?nsted堿。
相反,氧化會影響堿基,并在較小程度上影響mRNA 核糖單位的糖基團(tuán)。氧化可導(dǎo)致堿基裂解、鏈斷裂和 mRNA 二級結(jié)構(gòu)的改變。然而,如前所述,水解似乎被認(rèn)為是驅(qū)動 mRNA 降解的關(guān)鍵因素。
原文文獻(xiàn):
Linde,S;Dominik ,W;Jayesh A. K;Rein ,V;Gideon ,K;Wim ,J;Daan J.A. C.mRNA-lipid nanoparticle COVID-19 vaccines: Structure and stability.International Journal of Pharmaceutics.2021,601,120586
參考文獻(xiàn)來源:
1. Abdelwahed, W., Degobert, G., Stainmesse, S., Fessi, H., 2006. Freeze-drying ofnanoparticles: Formulation, process and storage considerations. Adv. Drug Deliv.Rev. 58 (15), 1688–1713. https://doi.org/10.1016/j.addr.2006.09.017.
2. Yanez Arteta, M., Kjellman, T., Bartesaghi, S., Wallin, S., Wu, X., Kvist, A.J.,Dabkowska, A., Sz′ekely, N., Radulescu, A., Bergenholtz, J., Lindfors, L., 2018. Successful reprogramming of cellular protein production through mRNA delivered
by functionalized lipid nanoparticles. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 115 (15),E3351–E3360. https://doi.org/10.1073/pnas.1720542115.
3. Ayat, N.R., Sun, Z., Sun, D.a., Yin, M., Hall, R.C., Vaidya, A.M., Liu, X., Schilb, A.L.,Scheidt, J.H., Lu, Z.-R., 2019. Formulation of biocompatible targeted ECO/siRNAnanoparticles with long-term stability for clinical translation of RNAi. Nucleic AcidTher. 29 (4), 195–207. https://doi.org/10.1089/nat.2019.0784.
4. Baden, L.R., El Sahly, H.M., Essink, B., Kotloff, K., Frey, S., Novak, R., Diemert, D.,Spector, S.A., Rouphael, N., Creech, C.B., McGettigan, J., Khetan, S., Segall, N.,Solis, J., Brosz, A., Fierro, C., Schwartz, H., Neuzil, K., Corey, L., Gilbert, P.,Janes, H., Follmann, D., Marovich, M., Mascola, J., Polakowski, L., Ledgerwood, J.,Graham, B.S., Bennett, H., Pajon, R., Knightly, C., Leav, B., Deng, W., Zhou, H.,Han, S., Ivarsson, M., Miller, J., Zaks, T., 2021. Efficacy and safety of the mRNA-1273 SARS-CoV-2 vaccine. N. Engl. J. Med. 384 (5), 403–416. https://doi.org/10.1056/NEJMoa2035389.
5. Ball, R.L., Bajaj, P., Whitehead, K.A., 2016. Achieving long-term stability of lipidnanoparticles: examining the effect of pH, temperature, and lyophilization. Int. J.Nanomed. 12, 305–315. https://doi.org/10.2147/IJN.S123062.
6. Bloom, K., van den Berg, F., Arbuthnot, P., 2020. Self-amplifying RNA vaccines forinfectious diseases. Gene Ther. 1–13 https://doi.org/10.1038/s41434-020-00204-y.Brader, M.L., Williams, S.J., Banks, J.M., Hui, W.H., Zhou, Z.H., Jin, L., 2021.
7. Encapsulation state of messenger RNA inside lipid nanoparticles. Biophys. J. https://doi.org/10.1016/j.bpj.2021.03.012.
8. Brisco, M.J., Morley, A.A., 2012. Quantification of RNA integrity and its use formeasurement of transcript number. e144–e144 Nucleic Acids Res. 40. https://doi.
org/10.1093/nar/gks588.
9.Burke, P.A., Gindy, M.E., Mathre, D.J., Kumar, V., Prud’homme, R.K., 2013. Preparationof Lipid Nanoparticles. US 2013/0037977.
10. Buschmann, M.D., Carrasco, M.J., Alishetty, S., Paige, M., Alameh, M.G., Weissman, D.,2021. Nanomaterial delivery systems for mRNA vaccines. Vaccines 9 (1), 65. https://doi.org/10.3390/vaccines9010065.